Тромбоциты по Фонио что это, нормы и отклонения у мужчин, женщин и детей

Определение количества тромбоцитов в крови

ОПРЕДЕЛЕНИЕ КОЛИЧЕСТВА ТРОМБОЦИТОВ В КРОВИ

Микроскопический метод подсчета

Чаще всего используется метод подсчета тромбоцитов в счетной камере Горяева микроскопией при фазовом контрасте, т. е. с фазово-контрастной приставкой. Мало точен и не может быть рекомендован метод подсчета тромбоцитов в мазке крови.

В настоящее время все шире используются определение количества тромбоцитов и их распределение по величине (гистограмма) с помощью автоматических счетчиков крови. Эти аппараты точны и позволяют проводить экспресс-диагностику (определения выполняются за 1 мин).

Принцип. Производится подсчет тромбоцитов в камере Горяева с применением в качестве разводящей и гемолизирующей жидкости раствора оксалата аммония. При подсчете используют фазово-контрастную микроскопию.

Реактивы. 1% раствор оксалата аммония.

Ход определения. Исследование можно проводить как в крови, полученной из пальца, так и в стабилизированной цитратом венозной крови. В последнем случае полученный при подсчете результат умножают на коэффициент 1,1 (учитывают разведение венозной крови раствором цитрата натрия — 9:1).

Разведение крови. Самым удобным и достаточно точным является способ разведения крови в пробирках (не в меланжере). Для этого, в предварительно высушенную чистую силиконированную или пластиковую (полистирол) пробирку пипеткой отмеривают 1,98 мл 1% оксалата аммония и осторожно вносят в нее 0,02 мл крови. В течение 1-2 мин содержимое пробирки тщательно перемешивают без вспенивания. Заполняют две камеры Горяева и на 10-15 мин помещают их для оседания тромбоцитов во влажную камеру (чашку Петри со смоченной фильтровальной бумагой или марлей). В каждой камере подсчитывают тромбоциты в 25 больших квадратах.

Фазово-контрастная микроскопия проводится при помощи обычного микроскопа, осветителя типа ОИ-19 (или аналогичного) и устройства для наблюдения методом фазового контраста КФ-1 или КФ-4.

Подготовка микроскопа. После установки на микроскопе фазовых объективов и фазового конденсора производят фокусировку объективов 40х на сетке камеры Горяева. Устанавливают освещение и центрируют изображение фазовой пластинки и кольцевой диафрагмы. Микроскопию проводят с зеленым светофильтром. При работе с фазово-контрастной установкой необходимо пользоваться камерами одного типа, так как фокусировка оптических систем зависит от толщины стекла камеры.

Расчет определения числа тромбоцитов в 1 мкл крови. Среднюю арифметическую величину из двух параллельных определений умножают на 1000 (площадь 25 больших квадратов — 1 мм2, высота камеры — 0,1 мм, разведение 1:100; следовательно, количество тромбоцитов должно быть умножено на1 х10х100 = 1000).

Нормальные пределы колебаний числа тромбоцитов в крови у человека составляют от 170 до 350 х 109/л. Ошибка метода ± 6,5%.

Подсчет тромбоцитов в крови и определение их размера в мазке — важная часть диагностики тромбоцитопений, эссенциальной и полицитемической тромбоцитемии, ДВС-синдрома, тромботической тромбоцитопенической пурпуры и других микротромбоваскулитов, нарушений гемостаза при аутоимунных формах патологии (СКВ, антифосфолипидном синдроме и др.) и при гепатолиенальном синдроме. При наследственных тромбоцитопатиях наблюдаются формы с микроцитозом (синдром Вискотта-Олдрича) и преобладанием гигантских форм кровяных пластинок (аномалии Бернара-Сулье и Мей-Хегглина), а также формы без изменения размеров этих клеточных элементов.

Подсчет тромбоцитов на гематологическом анализаторе.

На сегодняшний день методом выбора при исследовании тромбоцитов является их определение на автоматическом анализаторе. Автоматические счетчики позволяют получать достаточно надежные результаты при определении количества тромбоцитов.

При подсчете тромбоцитов по Фонио коэффициент вариации находится в пределах 20%, в камере Горяева — составляет 7-10%, тогда как автоматический подсчет воспроизводится с точностью до 2-4%.

Современные анализаторы сигнализируют о выходе количества тромбоцитов за референтные пределы, наличии агрегатов тромбоцитов, макротромбоцитов или других элементов, сравнимых по объему с тромбоцитами (микроэритроциты), что существенно облегчает трактовку получаемых результатов.

В то же время следует иметь в виду, что в отличие от ручного подсчета тромбоцитов, где проводится предварительный лизис эритроцитов, автоматические счетчики крови анализируют тромбоциты и эритроциты в одной камере без предварительной обработки. Тромбоциты распознаются по размерам в диапазоне 2-20 фл. Это создает проблему дифференцирования больших форм тромбоцитов (макротромбоцитов) и сравнимых с ними по объему эритроцитов (микроцитов), их фрагментов (шизоцитов), а также отшнуровавшихся фрагментов цитоплазмы лейкоцитов (клеточный дебрис).

Ложное занижение числа тромбоцитов может быть при их агрегации, агглютинации под действием тромбоцитарных агглютининов и при прилипании тромбоцитов к лейкоцитам (тромбоцитарный «сателлитизм»). При подсчете на гематологических анализаторах в качестве антикоагулянта используется ЭДТА. При наличии аутоантител к тромбоцитам калиевая соль ЭДТА инициирует агрегацию тромбоцитов, что проявляется псевдотромбоцитопенией.

Нормальные величины. Количество тромбоцитов у здоровых людей составляет х 109/л.

Клиническое значение

Снижение количества PLT в крови — тромбоцитопения — может развиваться в результате снижения продукции PLT:

· наследственные: синдром Франкони (Фанкони), врожденная тромбоцитопения, краснуха новорожденных;

· приобретенные: лейкозы, миелодиспластические синдромы, миелофиброз, метастазы новообразований в костный мозг; дефицит витамина В12 и фолиевои кислоты (мегалобластные анемии), ночная пароксизмальная гемоглобинурия, вирусные инфекции, интоксикации, наследственные аномалии, ионизирующее облучение, прием миелодепрессивных препаратов, циклическая тромбоцитопения, почечная недостаточность. в результате повышения деструкции PUT: инфекции (значительное, иногда катастрофическое снижение PLT, наблюдается при Конго-Крымской геморрагической лихорадке), эклампсия беременных, гемолитико-уремический синдром (ГУС), ВИЧ-инфекция, идиопатическая тромбоцитопеническая пурпура, системная красная волчанка, хронический лимфолейкоз, хронический активный гепатит, посттрансфузионная тромбоцитопения; гемодиализ, кровотечения, разрушение в селезенке (гиперспленизм при болезнях накопления, лимфомах, волосатоклеточном лейкозе, миелопролиферативных заболеваниях, портальной гипертензии);

· в результате потребления PLT: синдром ДВС.

Клинико-диагностическое значение тромбоцитопений (по и соавт., 2002)

Клинические ситуациии патологические состояния

Недостаточность гемопоэза — нарушение образования тромбоцитов

Гипо-и апластические состояния, лейкозы, метастазы рака в костный мозг, ионизирующее облучение, химиотерапия, дефицит витамина В12 или фолиевои кислоты, вирусные инфекции, сепсис, милиарный туберкулез и др.

Повышенное потребление тромбоцитов

Кровопотеря, ДВС, гигантская гемангиома, тромбоз, геморрагическая тромбоцитемия.

Повышенная деструкция тромбоцитов (внутриклеточный, внутрисосудистый гемолиз)

Ауто — и иммунные гемолитические анемии, изоиммунные, гетероиммунные (гаптеновые), лекарственные, вирусные, системная красная волчанка, лимфопролиферативные заболевания, поеттрансфузионные реакции и др.

Читайте также:  Ноотроп капсулы 400мг №48 купить в Москве по цене от 241 рублей

Механические повреждения тромбоцитов

Протезирование клапанов сердца, экстракорпоральное кровообращение.

Интоксикация: экзогенная, эндогенная

Химические вещества, лекарственные препараты, алкоголь, уремия, тяжелые заболевания печени.

Повышенная секвестрация в селезенке (гиперспленизм)

Спленомегалия при циррозе печени, портальной гипертензии, гистиоцитозах, болезнях накопления, болезни Гоше, синдроме Фелти, туберкулезе селезенки, миелопролиферативных заболеваниях, талассемии.

Иммунные тромбоцитопении

(по и соавт., 2002)

Идиопатическая (аутоиммунная) тромбоцитарная пурпура

Аутоантитела против неизмененных антигенов тромбоцитов больного

Гаптеновая (гетероимунная) тромбоцитопения

Гаптеновые аутоантитела против измененных или чужеродных антигенов на поверхности тромбоцитов

Антитела против комплекса лекарства (хинин, гепарин) с тромбоцитарным антигеном

Тромбоцитопения, ассоциированная с вирусной инфекцией

Антитела против вирусных антигенов, фиксированных на поверхности тромбоцитов, или против измененных тромбоцитарных антигенов

Аллоантитела против аллоантигенов тромбоцитов плода или переливаемых тромбоцитов

Неонатальная аллоиммунная тромбоцитопеническая пурпура

Аллоантитела матери, проникшие в организм плода. Направлены против аллоантигенов тромбоцитов плода и отца, отсутствующих на тромбоцитах матери

Повышение количества PLT в крови — тромбоцитоз — характерно для миелопролиферативных заболеваний. Тромбоцитоз наблюдается также при злокачественных новообразованиях, после операций, при воспалительных заболеваниях (острый ревматизм, ревматоидный артрит, туберкулез, остеомиелит), после спленэктомии, циррозе печени, кровотечениях, в период выздоровления при мегалобластных анемиях, лечении кортикостероидами, остром гемолизе, физических перенапряжениях.

Тромбоцитозы

Заболевания и синдромы

Спленэктомия, острая кровопотеря, острый гемолиз, состояние после операции, злокачественные новообразования, ревматоидный артрит, туберкулез, язвенный колит, остеомиелит

Миелопролиферативные заболевания (хронический миелолейкоз, идиопатический миелофиброз, эритремия, хронический мегакариоцитарный лейкоз), острый мегакариобластный лейкоз, идиопатическая геморрагическая тромбоцитемия

Средний объем тромбоцита (МРV)

У здоровых людей MPV равен 6-12 фл и находится в обратной зависимости от числа тромбоцитов. MPV увеличивается с возрастом. У мужчин MPV несколько выше, чем у женщин.

Использование ЭДТА в качестве антикоагулянта вызывает изменение формы тромбоцитов от диска к сфере, что приводит к увеличению MPV на 10-12% в течение 2 часов, а затем показатель существенно не меняется. Под действием цитрата натрия MPV может уменьшаться или увеличиваться, а при высокой концентрации (1:4) — не изменяется со временем. Кроме типа применяемого антикоагулянта и времени от момента взятия пробы до исследования, на MPV оказывает влияние температура окружающей среды. Преходящее увеличение MPV отмечается у рабочих, контактирующих с асфальтовыми испарениями, органическими растворителями. MPV — важный диагностический показатель функции тромбоцитов.

PDW — показатель, являющийся мерой гетерогенности размеров (анизоцитоза) тромбоцитов. Величина PDW в среднем составляет 10-15%.

Как артефакт, ложно завышенное увеличение PDW может быть связано с присутствием микроцитов, шизоцитов, микроагрегатов тромбоцитов, фрагментов цитоплазмы лейкоцитов.

Этот показатель находится в обратной зависимости от числа тромбоцитов и их периода жизни. В каждом конкретном случае важна не только величина PDW, но и ее динамика во времени, а также связь с другими тромбоцитарными показателями. Так, увеличение PDW с одновременным снижением MPV свидетельствует о преобладании микротромбоцитов среди общей популяции тромбоцитов (указывает на угнетение тромбоцитопоэза), а сочетание повышенного PDW с увеличением MPV отражает нарастание числа макротромбоцитов (усиление продукции тромбоцитов). Одновременное присутствие фракций макротромбоцитов и микротромбоцитов ведет к увеличению PDW, но MPV может оставаться в пределах нормы. В современных гематологических анализаторах отдельными показателями указывается процентное содержание микротромбоцитов (MicroPLT) и макротромбоцитов (MacroPLT).

PDW может применяться для дифференциальной диагностики. Так, увеличение PDW свыше 15% было обнаружено у 50% больных эссенциальной тромбоцитемией, у 21% пациентов с реактивным тромбоцитозом и лишь у 14% здоровых людей.

РСТ — показатель, характеризующий процент тромбоцитарной массы в объеме крови: вычисляется суммированием прямо измеренных объемов тромбоцитов или произведением среднего объема тромбоцитов на их число.

У здорового человека показатель стремится остаться стабильным: при уменьшении числа тромбоцитов усиливается тромбопоэз, в циркулирующую кровь выбрасывается большее число молодых макротромбоцитов, что ведет к увеличению MPV. При увеличении количества циркулирующих тромбоцитов снижается продукция их в костном мозге, тем самым уменьшается процент макротромбоцитов и MPV уменьшается. Однако при нарушении этого равновесия происходит или уменьшение РСТ, что, в конечном счете, приводит к патологии первичного гемостаза и риску возникновения кровотечений, или повышение РСТ, увеличивающее активность тромбоцитов и их способность к агрегации. Это повышает риск тромбозов.

Нормальные значения РСТ варьируют в пределах 0,15-0,35%. Было обнаружено, что снижение РСТ менее 0,1% обусловило возникновение послеоперационных кровотечений у пациентов с развившейся тромбоцитопенией. Также было отмечено, что этот показатель оказался более чувствительным для оценки риска возникновения кровотечения, чем число тромбоцитов.

Если скрининговые методы указывают на нарушение функции тромбоцитов, необходимо выполнить специальные тесты с учетом диеты и лекарственных препаратов, принимаемых пациентом (отмена за 7-10 суток перед исследованием глюкокортикостероидов, аспирина и других нестероидных противовоспалительных средств, адреноблокаторов, блокаторов кальциевых каналов, антиагрегантов: пентоксифиллина, папаверина, теофиллина, дипиридамола, тиклопидина, антибиотиков — пенициллина, карбенициллина).

Методы определения длительности кровотечения

Длительность кровотечения является скрининговым тестом для выявления нарушений первичного гемостаза. Метод основан на определении времени кровотечения из нанесенной на поверхности кожных покровов небольшой ранки стандартного размера. Это время зависит от способности сосудисто-тромбоцитарных гемостатических механизмов останавливать кровотечение из поврежденных мелких сосудов и капиллляров и поэтому его продолжительность может характеризовать состояние первичного гемостаза. Оно может быть нарушено вследствие дефектов сосудистого звена, неполноценности функциональных свойств кровяных пластинок или дефицита/дефекта плазменных кофакторов тромбоцитарных реакций (фибриногена, фактора Виллебранда), выраженной тромбоцитопении. При снижении числа тромбоцитов менее 100×109/л имеется прямая связь между степенью тромбоцитопении и удлинением времени кровотечения. Длительность кровотечения коррелирует также с геморрагическими тенденциями при тромбоцитопатиях и болезни Виллебранда. Увеличение времени кровотечения наблюдается и при тяжелой анемии (Ht

Методы подсчета тромбоцитов

На этой странице находиться только текст статьи. Полная статья с картинками и таблицами находится здесь
Для просмотра требуется программа Adobe Reader.

Преимущества использования измерительного канала PLT­F на гематологических анализаторах серии XN в практике большой
централизованной лаборатории

Читайте также:  Травы при сахарном диабете 2 типа

Е.И. Казначеева, ООО «ИНВИТРО»

Данная статья посвящена проблеме корректного подсчета количества тромбоцитов в сложных случаях (ЭДТА­зависимая агрегация тромбоцитов, тромбоцитарный анизоцитоз, выраженный микроцитоз эритроцитов и/или присутствие эритроцитарных фрагментов (шизоцитов)) и возможным путям решения этой проблемы, применяемым в практике большой централизованной лаборатории.
Ключевые слова: PLT­F – канал – дополнительный измерительный канал на гематологических анализаторах Sysmex серии XN, позволяющий выполнять подсчет количества тромбоцитов методом проточной цитометрии, используя клеточно­специфичное флюоресцентное окрашивание. TAT (turn­around­time) образца – временной промежуток между поступлением исследуемого образца в лабораторию и моментом готовности результата.

The benefits of using the PLT­F channel (hematological analyzer SysmexXN)
in a routine practice of a big centralized laboratory
E.Kaznacheeva, «INVITRO LLC»
This article is dedicated to a problem of platelet count in «difficult» samples (EDTA­caused platelet aggregation, platelet anisocytosis, presence of microRBC or RBC­fragments) and possible decisions in a routine practice of a big centralized laboratory. PLT­F­channel – an additional measuring channel, that allows to perform the platelet count using the flow cytometry method with cell­specified staining. TAT (turn­around­time) of sample is the time between the sample arriving into the laboratory and the moment, when the result is complete.

Подсчет количества тромбоцитов – важная и неотъемлемая часть общего анализа крови. Для больших централизованных лабораторий основным методом подсчета количества тромбоцитов является импедансный метод, вследствие его несомненных достоинств: доступность (все гематологические анализаторы, независимо от измеряют количество тромбоцитов именно этим методом), высокая скорость выполнения исследования (0,5–2 минуты, в зависимости от модели анализатора), возможность автоматизации и маршрутизации информации об образце, невысокая себестоимость (исследование выполняется вместе со всеми остальными показателями общего анализа крови и требует дополнительных реагентов), возможность проведения адекватных процедур контроля качества (есть аттестованные контрольные материалы для ежедневного внутрилабораторного контроля качества, а также программы межлабораторного сличения). Однако, этот метод имеет и ряд ограничений в применении, которые перечислены в таблице 1.
Таким образом, для ряда образцов недостаточно использование только импедансного метода, требуется еще и дополнительное, уточняющее исследование, позволяющее исключить или подтвердить влияние ЭДТА­зависимой тромбоцитарной агрегации на результат и корректно подсчитать все тромбоциты, вне зависимости от их размера и без влияния на результат подсчета возможного присутствия микроцитов и шизоцитов.
До недавнего времени в арсенале лабораторий было всего два метода, которые можно было применить для уточняющего подсчета количества тромбоцитов в рутинной практике: подсчет в камере Горяева (прямой метод) и подсчет в окрашенном мазке (косвенный метод, относительно количества эритроцитов). Несмотря на то, что подсчет количества тромбоцитов в камере Горяева позволяет решить поставленные перед дополнительным исследованием задачи, он неприменим в практике большой централизованной лаборатории, так как является очень затратным по времени, плохо стандартизируемым методом без возможности четкой идентификации образца на аналитическом этапе и маршрутизации информации об образце. Таким образом, в качестве дополнительного, уточняющего метода мы применяли метод непрямого подсчета концентрации тромбоцитов в окрашенном мазке (по Фонио), который также позволяет исключить или подтвердить наличие тромбоцитарных агрегатов и подсчитать тромбоциты, вне зависимости от их размера, но при использовании которого образец однозначно идентифицируется на аналитическом этапе, а трудозатраты несколько ниже, чем при применении подсчета в камере Горяева.
В лаборатории общеклинических исследований клинико­диагностической лаборатории «ИНВИТРО­Москва» для выполнения общего анализа крови из венозной крови используются гематологические анализаторы Sysmex XN­серии, дополненные автоматическими станциями для изготовления и окраски гематологических мазков SP­1000. После выполнения исследования на гематологических анализаторах, для образцов, результаты которых соответствуют определенным условиям (количество тромбоцитов, полученное импедансным методом более 550 или менее 130 и/или присутствует сообщение о возможном аномальном распределении тромбоцитов по размеру), назначалось дополнительное выполнение подсчета тромбоцитов «по Фонио» и изготавливался и окрашивался мазок. Назначение дополнительных исследований и изготовления мазка производилось в рамках системы правил программы Extended IPU, управляющей работой анализаторов Sysmex и предоставляющей доступ к информации среднему и врачебному медицинскому персоналу, а также обеспечивающей передачу итоговых результатов в ЛИС. Таким образом была обеспечена однозначная идентификация исследуемых образцов на всех этапах выполнения исследования, а также маршрутизация информации о них. Однако, принимая во внимание большое количество образцов (более 4000 в день), подобный алгоритм, несмотря на его четкость и прозрачность, также не был идеальным для использования в практике большой централизованной лаборатории: образцов, соответствующих перечисленным выше критериям было свыше 200 в день, что приводило к высокой загруженности врачей­микроскопистов, при этом скорость выполнения исследований было невелика, и для более, чем 50% образцов, для которых был применен уточняющий метод подсчета количества тромбоцитов, результат был готов только спустя 8 и более часов с момента поступления образца в лабораторию. Таким образом, перечисленные выше недостатки используемого нами метода заставили нас искать другие способы уточняющего подсчета концентрации тромбоцитов, которые без потери качества выполнения исследования позволили бы ускорить процесс его выполнения, а также снизили бы нагрузку на врачебный персонал.
Несколько лет назад в нашей лаборатории уже была предпринята попытка заменить подсчет тромбоцитов «по Фонио» подсчетом тромбоцитов во флюоресцентном канале одновременно с подсчетом доли ретикулоцитов. Проведенные исследования показали, что данный метод позволяет получить корректные данные для образцов с аномальным распределением тромбоцитов по размеру, а также для образцов, в которых присутствуют микроциты и шизоциты, однако чувствительность метода к наличию в образце тромбоцитарных агрегатов оказалась недостаточной, и заменить подсчет «по Фонио» подсчетом тромбоцитов флюоресцентным методом в ретикулоцитарном измерительном канале мы не смогли.
В 2016 году появилась информация о том, что корпорация Sysmex готова представить новый измерительный канал, предназначенный специально для подсчета тромбоцитов флюоресцентным методом. В сотрудничестве со специалистами компании Sysmex мы запланировали проведение исследований аналитических характеристик этого канала, а также возможности его использования в рутинной практике. В начале 2017 года на одном из анализаторов XN1000, используемом в КДЛ «ИНВИТРО­Мск», был активирован PLT­F канал, и в течение 2 месяцев на нем было измерено более 3000 образцов крови со следующими характеристиками:
1. Количество тромбоцитов менее 130 или больше 550;
2. Присутствует «фдаг» об аномальном распределении тромбоцитов;
3. Количество тромбоцитов менее 180, средний объем эритроцита ниже 80 фл;
4. Любое количество тромбоцитов, но присутствует «флаг» о наличии фрагментов эритроцитов.
Для каждого из этих образцов было получено три результата: результат подсчета импедансным методом, результат подсчета из PLT­F канала, результат подсчета концентрации тромбоцитов в окрашенном мазке. После анализа полученных данных выяснилось следующее:
1. Для проб с низким количеством тромбоцитов без «флагов» о наличии аномального распределения тромбоцитов и тромбоцитарных агрегатов количества тромбоцитов, полученные всеми тремя методами практически совпадали;
2. Для всех образцов с тромбоцитарными агрегатами, обнаруженными в окрашенном мазке, каналом PLT­F был сгенерирован «флаг» о наличии тромбоцитарных агрегатов, при этом в небольшом количестве проб с «флагом» о наличии тромбоцитарных агрегатов из PLT­F – канала при микроскопии окрашенного мазка тромбоцитарные агрегаты обнаружены не были;
3. Для образцов с «флагами» об аномальном распределении тромбоцитов и присутствии эритроцитарных фрагментов результат, полученный из PLT­F канала, совпадал с результатом подсчета в мазке, тогда как результат, полученный импедансным методом для ряда образцов оказался некорректен.
Таким образом, был сделан вывод о возможности использования PLT­F канала в рутинной практике нашей лаборатории для дополнительного подсчета количества тромбоцитов в образцах, соответствующих приведенным выше критериям. Алгоритм уточнения количества тромбоцитов после измерения импедансным методом стал выглядеть следующим образом: образцы, удовлетворяющие одному или нескольким из четырех приведенных выше условий, дополнительно измеряют в PLT­F канале. Если полученный результат больше 30 и не сопровождается флагом о присутствии тромбоцитарных агрегатов – он подтверждается и передается в ЛИС. Если присутствует флаг о возможном присутствии тромбоцитарных агрегатов – выполняется верификация их наличия в окрашенном мазке, и результат выдается с примечанием о его некорректности. Если измеренное в PLT­F канале количество тромбоцитов менее 30 – также проводится микроскопия окрашенного мазка. Это позволило отказаться от микроскопического исследования более, чем для 85% образцов, исследованных в PLT­F­канале. Данные по сравнению TAT для образцов с количеством тромбоцитов ниже 130 после внедрения PLT­F канала с данными для аналогичных образцов до внедрения PLT­F канала представлены в таблице №2.
Использование PLT­F канала позволило существенно ускорить выполнение общего анализа образцов венозной крови с патологическим количеством тромбоцитов, а также снизило нагрузку на врачебный персонал. В настоящее время два гематологических анализатора Sysmex, работающие в лаборатории общеклинических исследований клинико­диагностической лаборатории «ИНВИТРО­Москва» оснащены этим измерительным каналом.

Читайте также:  Аденоиды у детей удалять или нет ДГМКЦ ВМТ им

Подсчет тромбоцитов по Фонио

Подсчет тромбоцитов по Фонио (назначается только вместе с ОАК) 750₽

Тромбоциты, микроскопия (подсчет в окрашенном мазке по методу Фонио)

Тромбоциты участвуют во всем процессе свертывания крови, начиная от образования первичного тромба в области повреждения кровеносных сосудов и заканчивая участием в процессах регулирования проницаемости и тонуса сосудов.

Подсчет максимально точного количества тромбоцитов осуществляется при помощи камеры Горяева и метода Фонио. Подсчет тромбоцитов по Фонио довольно точен. Метод Фонио является наиболее удобным именно при автоматическом подсчете.

Важное условие для корректной работы системы свертывания — это нахождение в кровяном русле определенного количества зрелых тромбоцитов. Отклонения в любую сторону могут иметь неблагоприятные последствия. Норма тромбоцитов в крови отличается в зависимости от возраста и пола. Если их уровень понижен, появляется склонность к кровотечениям, свертываемость крови ухудшается, ее трудно остановить. Если содержание тромбоцитов превышает норму, кровь становится густой, есть риск образования тромбов и закупорки сосудов.

Тромбоциты образуются в костном мозге из гигантских клеток — мегакариоцитов. По сути, они являются фрагментами этих клеток и представляют собой окруженные мембраной мелкие безъядерные бесцветные пластинки овальной или округлой формы, включающие гранулы. Диаметр тромбоцитов составляет от 2-х до 4-х мкм. Их принято называть клетками крови, как лейкоциты и эритроциты, хотя они таковыми не являются. Это постклеточные структуры, или бляшки Биццацеро (по имени итальянского ученого, который внес большой вклад в их изучение). В крови находится около 2/3 всех тромбоцитов, остальные содержатся в селезенке.
Функции кровяных пластинок

При повреждении сосудистой стенки сразу же происходит активация кровяных пластинок. Они приобретают шаровидную форму, на них появляются выросты, из-за чего они становятся похожими на звезду. Тромбоциты в активной форме способны к слипанию друг с другом (агрегации) и прилипанию к стенке сосуда (адгезии). В плазму крови они выделяют фермент, под действием которого растворимый фибриноген преобразуется в нерастворимый фибрин, который опутывает форменные элементы крови своими нитями, словно сетями. Образовавшийся тромб закрывает дефект в поврежденном сосуде. Тромбоциты принимают участие в растворении фибринового сгустка и поддерживают спазм поврежденных сосудов. Еще одна важная функция — это обеспечение питательными веществами клеток, которые выстилают внутреннюю поверхность кровеносных сосудов.

Показания к назначению исследования

  • диагностика полицитемий, тромбоцитопений, тромбоцитозов;
  • мониторинг терапии

Исследуемый материал

Интерпретация результатов исследований содержит информацию для лечащего врача и не является диагнозом. Информацию из этого раздела нельзя использовать для самодиагностики и самолечения. Точный диагноз ставит врач, используя как результаты данного обследования, так и нужную информацию из других источников: анамнеза, результатов других обследований и т. д.

Референтные значения: 150–400×10^9/л

Почему у нас

В основе работы лежит принцип единой комплексной системы диагностики и лечения.

Наличие собственной лаборатории, что позволяет в кротчайшие сроки выполнять необходимые исследования.

Адреса наших филиалов:
г. Воронеж, ул. Владимира Невского, 19, ул. Пограничная, 2.

Предварительная запись по тел.: (473) 280-20-30

Ссылка на основную публикацию
Тревожный симптом патологии у новорожденных – клиника «9 месяцев»
Cимптомы ДЦП у новорожденного ребенка Для малышей болезни нервной системы крайне опасны, особенно до года, ведь в этот момент они...
ТОП-лучших кремов для фиксации зубных протезов
10 лучших кремов для зубных протезов Характеристика в рейтинге По достижению пожилого возраста многие люди сталкиваются с проблемой потери зубов....
Топография симпатического ствола 1
Симпатический ствол на шее Симпатический ствол Симпатический ствол (truncus sympathicus) парный, образован узлами, соединенными между собой симпатическими волокнами. Симпатический ствол...
Тредмил-тест показания и противопоказания, подготовка, проведение детям и взрослым, виды — нагрузочн
Тредмил-тест Тредмил-тест – вид диагностической провокационной пробы, применяющийся для оценки функциональной способности сердца и легких. Дозированная нагрузка дается на тренажере...
Adblock detector